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LNP肝脱靶新突破:aroLNP如何用可电离脂质结构设计让LNP"绕开"肝脏

发布时间:2026年06月25日 20:33 | 浏览次数:381
LNP肝脱靶 aroLNP 可电离脂质 mRNA递送靶向 LNP组织选择性 LNP避肝 aroLNP SM-102对比 LNP淋巴结靶向
LNP(脂质纳米颗粒)是mRNA疫苗成功递送的核心载体,但长期以来存在一个被疫苗成功掩盖的问题——肝富集。肌肉注射后,大量LNP通过血流进入肝脏,而非到达目标组织。对于疫苗来说这尚可接受,但在CAR-T体内重编程、肺部基因修复、肿瘤免疫治疗等需要肝外递送的场景中,肝富集成了必须突破的瓶颈。2026年,宾夕法尼亚大学Mitchell实验室在JACS发表的研究给出了一种全新思路:在可电离脂质的尾链引入苯环骨架,就能让LNP的肝脏mRNA递送量降低10倍以上,同时淋巴结递送反而更强。这意味着——LNP的组织选择性可能不是一个配方问题,而是一个纯化学问题
aroLNP与SM-102肝脱靶机制对比示意图:aroLNP通过苯环骨架实现ApoE非依赖性,肝脏mRNA表达降低10倍,淋巴结递送增强

图1. aroLNP技术原理示意图(基于JACS 2026, 148(13), Fig.1重绘)

核心论文:aroLNP — Liver-Detargeted Aromatic Bioreducible mRNA Lipid Nanoparticles Confer Lymph Node Tropism

期刊:Journal of the American Chemical Society · 2026年 · 第148卷 第13期 14137-14150页

DOI10.1021/jacs.6c00080

通讯作者:Michael J. Mitchell(宾夕法尼亚大学生物工程系)

第一作者:Marshall S. Padilla, Alex G. Hamilton, Hannah M. Yamagata

PubMed ID:41873855

全文链接ACS Publications

一、LNP为什么容易肝富集——困扰mRNA递送十年的问题

本章重点:LNP的肝富集并非不可改变,而是此前的可电离脂质(如SM-102、ALC-0315)本身就是按"最大化肝表达"优化的。生理结构(肝窦窗孔+Kupffer细胞)和血清蛋白吸附(ApoE)共同决定了这个"默认目的地"。要"避肝",就得从脂质化学结构层面重新设计。

LNP的肝富集不是偶然,而是两层因素叠加的结果。

第一层是生理结构。肝窦内皮细胞有100-200 nm的窗孔,而LNP的典型粒径正好落在这个区间——LNP从血液进入肝组织几乎是被"筛"进去的。再加上肝脏驻留的大量Kupffer细胞是专职吞噬细胞,对纳米颗粒来说,肝脏就是一个天然的收集站。

第二层更关键,是脂质设计的历史选择。LNP四组分中,可电离脂质(如SM-102、ALC-0315)的pKa在6-7之间,在血液pH 7.4下接近中性。但这些脂质与载脂蛋白ApoE有较高的亲和力,而ApoE在肝脏高表达——LNP表面吸附的ApoE越多,肝细胞通过LDL受体摄取的效率就越高。这不是巧合:SM-102和ALC-0315在开发阶段就是按照"最大化肝脏表达"来优化的,因为mRNA疫苗需要高效表达抗原,肝细胞恰好是极好的蛋白质工厂。

换句话说:不是LNP"碰巧"去了肝脏,而是现有主流可电离脂质本来就是为"去肝脏"而设计的。

对疫苗来说,肝摄取并不致命——肝脏表达抗原同样能激发免疫应答。但如果把场景换成CAR-T的体内重编程,你需要LNP把编辑工具送到T细胞,而不是肝脏;换成肺部基因修复,你需要LNP到达肺泡上皮,而不是肝脏;换成需要重复注射的肿瘤免疫治疗,肝累积会在第二、第三次给药时放大毒性——Kupffer细胞已经摄入过一次,二次暴露时炎症因子和转氨酶都可能升高。

传统解决思路主要有两条:一是配方层面调整,比如改变PEG脂质比例、调整胆固醇含量来改变LNP的表面性质和粒径;二是配体修饰,在LNP表面接上靶向分子(如抗体、多肽、适配体)来"引导"LNP去特定组织。两条路线都有进展,但都有局限——配方调整的靶向精度有限,配体修饰增加了工艺复杂性和监管成本。

2026年,Mitchell实验室给出了第三条路:不动配方、不加配体,只改可电离脂质的化学结构,就能让LNP"绕开"肝脏。这条路的逻辑是——如果肝富集的根源在于脂质结构与ApoE的相互作用模式,那从分子结构层面重新设计,就能从根本上改变LNP的体内行为。

核心问题由此变为:LNP的组织选择性,到底是一个配方问题,还是一个化学结构问题?aroLNP给出的答案是后者。

二、aroLNP:苯环改写LNP的"默认目的地"

本章重点:Mitchell团队采用模块化设计——胺核心+可调尾链长度(C6-C12)+苯环区域化学(邻/间/对位),在可电离脂质尾链引入苯环骨架。aroLNP通过ApoE非依赖性机制实现肝脱靶,肌肉注射后肝mRNA表达量比SM-102低至少10倍,淋巴结递送与SM-102相当甚至更强,且显著降低全身炎症因子。

Mitchell团队的设计思路可以拆成三个模块:

  1. 胺核心:提供可电离的叔胺基团,pKa控制在6-7区间,保证内体逃逸能力
  2. 可调尾链长度:C6到C12,调节疏水性和膜融合效率
  3. 苯环区域化学:在尾链中嵌入1,2-(邻位)、1,3-(间位)或1,4-(对位)取代苯环,作为刚性支架产生区域化学差异

苯环在这里不只是"加个环"那么简单。它同时扮演三个角色:一是作为刚性支架,改变脂质分子的整体构象和堆积行为;二是通过π-π相互作用增强mRNA的稳定性及转染效率;三是引入二硫键提高生物降解性——aroLNP的全称中"Bioreducible"就来自这里。

但真正让业界关注的不是设计本身,而是给药后的结果。

关键数据:肝降10倍,淋巴结不降反升

研究团队以SM-102(Moderna新冠疫苗LNP的标准可电离脂质)为对照,在小鼠模型中系统比较了aroLNP的器官分布:

  • 肝表达量(肌肉注射):所有aroLNP组小鼠肝脏荧光素酶水平至少比SM-102低10倍
  • 肝表达量(静脉注射):aroLNP肝脏递送量比SM-102低至少4倍,同时实现强烈的脾脏转染
  • 淋巴结递送:aroLNP在淋巴结中展现与SM-102相当的强效表达,甚至更强
  • 免疫应答:SARS-CoV-2疫苗模型中,aroLNP诱导的高滴度抗原特异性IgG(约10⁷·³至10⁸·³)与SM-102相当;同时显著增加效应记忆T细胞(TEM)生成,减少终末效应T细胞
  • 炎症因子:代表性脂质C6mPhE-383显著降低全身IL-6、TNF和IFN-γ水平

第一作者Hannah Yamagata在宾大新闻稿中的比喻很直观:"淋巴结是mRNA疫苗教会免疫系统识别潜在病原体的关键部位。如果LNP有'GPS',我们希望它的导航终点是淋巴结,而不是肝脏。"

对比维度 SM-102 LNP aroLNP
可电离脂质结构 线性烷基尾链,无芳香环 尾链嵌入苯环骨架(邻/间/对位可调)+二硫键
肝mRNA表达(肌注) 基准(高) 降低≥10倍
肝mRNA表达(静注) 基准(高) 降低≥4倍,脾脏转染增强
淋巴结递送 有,但伴随高肝表达 与SM-102相当或更强,肝表达极低
ApoE依赖性 依赖ApoE吸附→肝LDL受体摄取 ApoE非依赖性,不走肝代谢路径
免疫应答 高IgG滴度,终末效应T细胞为主 相当IgG滴度,效应记忆T细胞(TEM)显著增加
全身炎症因子 基准 IL-6、TNF、IFN-γ显著降低
主要细胞靶向 肝细胞为主 树突状细胞(DC)和B细胞,巨噬细胞摄取率低
粒径/包封率 ~100 nm / >90% 60-120 nm / >80%

机制解析:为什么苯环能让LNP"绕开"肝脏?

aroLNP的肝脱靶不是靠"屏蔽"肝脏,而是从根源上改变了LNP与血清蛋白的相互作用模式。

传统LNP(如SM-102)进入血液后,表面会吸附ApoE等载脂蛋白,形成所谓的"蛋白冠"(protein corona)。ApoE是肝脏LDL受体的配体——LNP一旦"穿上"ApoE的外衣,就等于挂上了"去肝脏"的标签。SM-102之所以肝表达高,正是因为它与ApoE的亲和力强。

aroLNP的关键突破在于:苯环骨架的引入改变了脂质分子的空间构象和表面性质,使LNP不再依赖ApoE吸附。没有ApoE"导航",LNP就不会被肝细胞通过LDL受体大量摄取。同时,aroLNP在注射部位表现出强保留特性低全身循环泄漏——更多LNP留在注射部位引流至淋巴结,而不是随血流冲进肝脏。

需要指出的是,从"苯环引入"到"ApoE非依赖"之间的精确因果链尚未完全阐明——苯环的刚性支架效应、π-π相互作用、分子曲率变化中,究竟是哪种性质主导了血清蛋白吸附模式的改变,仍需进一步的蛋白冠组分分析和结合亲和力定量研究来回答。但无论具体机制如何,实验结果已经明确:苯环骨架的引入足以让LNP摆脱对ApoE的依赖,从而从根本上改变其体内分布。

在淋巴结中,aroLNP主要被树突状细胞(DC)和B细胞内吞,巨噬细胞摄取率低。这个细胞选择性也解释了为什么aroLNP能激发更强的适应性免疫应答——DC是激活T细胞的核心抗原递呈细胞,而减少巨噬细胞摄取意味着减少非特异性清除。

核心洞察:aroLNP的肝脱靶不是通过配方调整或配体修饰实现的,而是完全通过可电离脂质的结构设计做到的。LNP的组织选择性,本质上是一个化学结构问题。

这个结论的意义不止于aroLNP本身。如果组织选择性可以靠脂质化学结构来"编程",那LNP递送就从"碰运气"进入了"可设计"的时代——你想要LNP去哪个器官,就在脂质结构上做对应的设计。这恰恰也是2025-2026年多个团队正在各自探索的方向。

三、2025-2026:LNP"避肝"靶向的多条路线齐头并进

本章重点:aroLNP并非孤例。同期至少有三条技术路线在不同团队中推进——清华EB-LNP通过白蛋白吸附实现淋巴结靶向并规避肝累积;国家纳米科学中心利用AI解析脂质三维构象筛选出脾靶向脂质P1;北大PILOT平台通过多肽-可电离脂质实现五器官可调控靶向。三条路线机制不同,但共同指向一个趋势:LNP的组织选择性正在从"被动接受"变为"主动设计"。

aroLNP给出了"苯环改构→ApoE非依赖→肝脱靶"的路线,但它不是唯一的方向。2025年到2026年初,至少三个团队从不同角度切入"LNP避肝"这一命题,而且都发表在顶刊上——这说明LNP肝脱靶已经从个别实验室的探索,变成了领域级的共识性方向。

路线一:白蛋白吸附——清华EB-LNP

论文:Albumin-recruiting lipid nanoparticle potentiates the safety and efficacy of mRNA vaccines by avoiding liver accumulation

期刊:Nature Materials · 2025年8月

DOI10.1038/s41563-025-02284-w

通讯作者:喻国灿(清华大学化学系)、程功(清华大学基础医学院/深圳湾实验室)、陈小元(新加坡国立大学)

清华团队的思路和aroLNP截然不同。aroLNP是"甩掉"ApoE的肝导航,EB-LNP则是"换一个导航员"——白蛋白。

研究团队构建了24种带有白蛋白结合基团的离子化脂质(AB-lipid)库,筛选出AB19-lipid为最佳候选,引入四乙烯二醇链接子合成EB-lipid。EB-LNP进入体内后主动吸附白蛋白,利用白蛋白在淋巴液中的高浓度和天然淋巴引流特性,将LNP"导流"至淋巴结,而非随血流进入肝脏。活体成像显示,EB-LNP主要在注射部位和淋巴结积累,而传统PEG-LNP显著积累在肝脏。

值得注意的是,EB-LNP在多种动物模型(小鼠、兔、迷你猪)中均验证了规避肝累积的效果,多次注射后未出现明显肝功能异常,且未诱导产生针对PEG的特异性抗体——这对需要重复给药的治疗场景尤为重要。在B16-OVA黑色素瘤和HPV相关肿瘤模型中,EB-LNP展现了卓越的免疫保护效果。

路线二:AI三维构象筛选——国家纳米科学中心P1脂质

论文:Artificial intelligence-guided design of LNPs for in vivo targeted mRNA delivery via analysis of the spatial conformation of ionizable lipids

期刊:Nature Biomedical Engineering · 2026年3月

通讯作者:林耀新、王浩、高玉瑞(国家纳米科学中心)、王羿(北京理工大学)

如果说aroLNP是"手动挡"的精细雕琢,国家纳米科学中心的工作就是"自动挡"的AI扫荡——而且他们引入了一个此前被忽略的维度:脂质的三维空间构象

研究团队构建了可电离脂质分子文库,利用分子动力学模拟勾勒每种脂质的动态3D构象,再将3D构象数据转化为2D密度图像用于AI模型训练。AI模型筛选出的脂质P1呈现稳定的三尾锥形构象,这种构象会特异性吸附免疫球蛋白M(IgM)形成"脾靶向蛋白冠",从而实现脾脏靶向mRNA递送——通过引导LNP去脾脏,间接避开了肝脏。

关键数据:优选LNP的递送效率较已获批脂质ALC-0315提升14.8倍。P1-LNP递送的mRNA疫苗在小鼠黑色素瘤模型中引发强烈抗体和T细胞应答,显著抑制肿瘤生长。

这项工作的核心贡献不在于P1本身,而在于方法论——它证明了脂质的三维空间构象(而非仅仅是二维结构式)是决定LNP器官分布的关键变量。这与aroLNP的发现形成呼应:苯环引入改变的是分子空间构象,AI模型则直接把构象作为筛选特征。两条路线从不同角度指向同一个结论——构象决定命运

此外,MIT的Anderson/Langer团队在2026年于Nature Communications上发布了LNPDB数据库,整合了近两万条LNP结构和功能数据,用深度学习模型预测LNP递送性能,发现双层膜稳定性和临界堆积参数与递送效率相关。这类数据驱动的设计框架,未来可能与上述实验路线形成互补——AI负责高通量初筛,实验验证精修结构。

另一值得关注的方向是北京大学程强和中科院动物所魏妥团队的PILOT平台(Nature Materials, 2025.9, DOI: 10.1038/s41563-025-02320-9)。PILOT将多肽与可电离脂质结合,合成了超过120种多肽可电离脂质(PIL),实现了对肺、肝、脾、胸腺、骨骼五个器官的可调控靶向递送。PILOT的定位是"多器官可编程"而非纯粹的"避肝"——它提供的是一种器官选择性的通用策略,但其中"选择靶向肝外器官"的能力,天然涵盖了避肝需求。值得注意的是,PILOT平台的肝靶向和肺靶向LNP还能高效共递送先导编辑组分,实现器官特异性基因编辑,这为LNP递送从疫苗向基因治疗拓展提供了重要参考。

三条路线对比

维度 aroLNP(Penn) EB-LNP(清华) P1-LNP(国家纳米中心)
技术路线 苯环骨架改构可电离脂质 白蛋白结合基团修饰脂质 AI筛选三维构象→脾靶向
核心机制 ApoE非依赖性,注射部位强保留 吸附白蛋白→淋巴引流→淋巴结 三尾锥形构象吸附IgM→脾靶向蛋白冠
避肝方式 直接肝脱靶(肝表达降≥10倍) 间接避肝(淋巴引流绕过肝脏) 间接避肝(脾靶向替代肝脏)
主要靶向器官 淋巴结(肌注)/脾脏(静注) 淋巴结 脾脏
动物模型 小鼠 小鼠、兔、迷你猪 小鼠(黑色素瘤模型)
免疫应答 强IgG+效应记忆T细胞 强免疫保护(肿瘤模型) 强抗体+T细胞应答,抑制肿瘤
重复给药安全性 炎症因子显著降低(数据尚早期) 多次注射无肝功能异常,无抗PEG抗体 待后续验证
发表信息 JACS, 2026 Nature Materials, 2025.8 Nature Biomedical Engineering, 2026.3

此外,MIT的Anderson/Langer团队也在2026年于Nature Communications上发布了LNPDB数据库,整合了近两万条LNP结构和功能数据,用深度学习模型预测LNP递送性能,发现双层膜稳定性和临界堆积参数与递送效率相关。这类数据驱动的设计框架,未来可能与上述实验路线形成互补——AI负责高通量初筛,实验验证精修结构。

三条路线,三种机制,但共同指向同一个趋势:LNP的组织选择性正在从"生理结构决定的被动命运"变为"化学结构设计的主动选择"。对于上游脂质原料供应商和配方研发人员来说,这意味着新的可电离脂质结构一旦定型,对应的辅助脂质配方也需要同步迭代。

四、新结构对LNP配方原料的影响——上游供应商需要关注什么

本章重点:新型可电离脂质(苯环骨架、多肽修饰、锥形构象)的涌现,对LNP四组分中的辅助脂质提出了新要求。DSPE-PEG比例需要重新优化,PEG脂质的anchor选择可能需要从传统DMG-PEG转向更长链或可降解anchor,以匹配新脂质的体内行为。这对脂质原料供应商意味着新的定制化需求窗口。

aroLNP、EB-LNP、P1-LNP虽然路线不同,但对配方体系的影响有一个共同点:当可电离脂质的结构发生根本性变化——从线性烷基尾链变为苯环骨架、从单一脂质变为多肽-脂质偶联物、从平面结构变为锥形三维构象——LNP的组装行为、表面性质和体内分布都会随之改变,原有的辅助脂质配方参数不再适用。

DSPE-PEG比例需要重新优化

在传统LNP四组分中,PEG脂质(如DMG-PEG2000或DSPE-PEG2000)负责在LNP表面形成水化层,防止聚集、延长循环时间。PEG脂质的比例直接影响LNP的粒径、稳定性和体内分布——比例过高会抑制细胞摄取,过低则容易聚集。

aroLNP的苯环骨架改变了脂质的疏水性和堆积行为,EB-LNP引入了白蛋白结合基团,P1的三尾锥形构象改变了分子的临界堆积参数。这些变化意味着LNP表面的PEG密度分布和"脱落动力学"都会不同。以aroLNP为例,其注射部位强保留特性可能对PEG的"脱壳"速率有不同要求——PEG需要在淋巴结微环境中及时脱落以暴露LNP表面、促进DC摄取,但在循环过程中需要保持稳定。这就要求配方研发人员针对新型可电离脂质重新筛选DSPE-PEG的最优比例,而非直接套用SM-102或ALC-0315的既有配方。值得注意的是,清华EB-LNP论文中明确报道了EB-lipid的最优质量百分比为2.70%——这一数据直接说明了新型功能化脂质引入后,配方比例确实需要重新优化,而非沿用传统参数。国家纳米中心的研究同样表明,P1脂质的三尾锥形构象改变了分子的临界堆积参数,这种结构层面的变化必然传导至LNP的组装行为和表面性质。

PEG脂质anchor选择的新要求

PEG脂质的疏水anchor(如DMG、DSPE、DSA等)决定了PEG在LNP膜上的锚定稳定性。传统配方中,DMG-PEG2000因其在循环中较快"脱壳"的特性而被广泛使用——这对疫苗来说是优势(脱壳后暴露LNP表面,促进细胞摄取),但对需要长效循环的肝外递送场景可能不适用。

新型避肝LNP的体内行为与传统LNP差异显著。例如,aroLNP需要在注射部位强保留并引流至淋巴结,EB-LNP需要维持白蛋白吸附层不被过早置换——这些都对PEG anchor的脱壳动力学提出了新的、不同于疫苗配方的要求。目前,aroLNP和P1-LNP的原始论文尚未公开报道系统的PEG脂质比例或anchor筛选数据,相关配方优化工作仍需后续研究验证。但从EB-LNP团队对24种AB-lipid的系统筛选和2.70%最优配比的确定来看,新型脂质的配方优化空间是实实在在的。配方研发人员可能需要从传统DMG-PEG转向更长链anchor(如DSPE-PEG)或可降解anchor,以匹配新脂质的体内行为特征。

原料定制化需求窗口

对科研院校和药物研发机构的课题组来说,探索新型避肝LNP配方时,往往需要不同链长、不同端基、不同anchor的PEG化磷脂进行系统筛选。冰合试剂可提供多规格、可定制的DSPE-PEG系列功能化磷脂——包括不同PEG链长(MW 1000-5000)、多种端基(NHS、MAL、NH₂、Biotin)及不同疏水anchor可选——以支持新型可电离脂质的配方优化研究。此外,双功能PEG交联剂和点击化学试剂(Tetrazine/TCO/DBCO系列)也可用于LNP表面修饰与靶向配体偶联,满足避肝LNP在功能化层面的实验需求。

值得关注的是,这一轮可电离脂质结构创新的窗口期可能并不长。aroLNP等技术的验证目前尚处于临床前研究阶段,距离IND申报仍有较长路径。但对于上游原料供应商和配方研发团队而言,提前储备新型辅助脂质配方数据、建立结构-性能关联数据库,是在这一轮技术迭代中占据先手的关键。

五、关于LNP肝脱靶的常见问题(FAQ)

以下问答整理了LNP肝脱靶领域的常见问题,便于快速了解核心概念和技术进展。
Q1:aroLNP是什么?
aroLNP(Aromatic LNP)是宾夕法尼亚大学Mitchell实验室开发的一种肝脱靶LNP技术,发表于JACS(2026年)。其核心创新是在可电离脂质的尾链中引入苯环骨架(邻/间/对位可调),通过ApoE非依赖性机制实现肝脱靶。肌肉注射后,aroLNP的肝脏mRNA表达量比SM-102降低至少10倍,同时淋巴结递送效率与SM-102相当或更强。
Q2:LNP为什么容易肝富集?
LNP肝富集由两层因素决定。生理层面:肝窦内皮细胞有100-200 nm窗孔,LNP粒径正好在此区间,容易被"筛"入肝组织;Kupffer细胞作为专职吞噬细胞进一步清除纳米颗粒。分子层面:现有主流可电离脂质(SM-102、ALC-0315)在开发时就是按"最大化肝表达"优化的,其与载脂蛋白ApoE的高亲和力使LNP通过LDL受体被肝细胞大量摄取。简言之,不是LNP"碰巧"去了肝脏,而是现有脂质本来就是为"去肝脏"设计的。
Q3:可电离脂质如何影响LNP的靶向性?
可电离脂质是LNP四组分中最关键的结构变量,它决定了pKa、内体逃逸效率、血清蛋白吸附模式(蛋白冠组成)和体内分布。aroLNP的研究证明,仅改变可电离脂质的化学结构(引入苯环骨架),就能改变LNP与ApoE的相互作用模式,实现肝脱靶。国家纳米科学中心的AI筛选研究进一步表明,脂质的三维空间构象(而非仅二维结构式)是决定器官分布的关键变量。
Q4:SM-102和aroLNP有什么区别?
SM-102是Moderna新冠疫苗LNP使用的可电离脂质,采用线性烷基尾链,依赖ApoE吸附实现高肝表达。aroLNP在尾链中引入苯环骨架和二硫键,不依赖ApoE,肝表达量降低≥10倍(肌注),淋巴结递送与SM-102相当或更强。此外,aroLNP显著增加效应记忆T细胞(TEM)生成,降低全身炎症因子(IL-6、TNF、IFN-γ),在免疫应答质量上优于SM-102。
Q5:LNP肝脱靶对临床有什么意义?
LNP肝脱靶对三类临床场景意义重大:①CAR-T体内重编程——需要LNP将编辑工具递送至T细胞而非肝脏;②基因编辑治疗——需要靶向特定器官(如肺、脾),避免肝脏非靶编辑;③重复给药治疗——肝累积会在多次给药时放大毒性,肝脱靶可显著改善重复给药安全性。目前aroLNP等技术的验证尚处于小鼠模型阶段的临床前研究,距离临床转化仍有较长路径。
Q6:目前LNP避肝靶向有哪些技术路线?
主要有三条路线:①化学结构设计——以aroLNP为代表,在可电离脂质尾链引入苯环骨架,通过ApoE非依赖性机制实现肝脱靶(JACS, 2026);②白蛋白吸附——以清华EB-LNP为代表,通过白蛋白结合基团修饰脂质,利用淋巴引流规避肝累积(Nature Materials, 2025.8);③AI构象筛选——以国家纳米科学中心P1脂质为代表,利用AI解析脂质三维构象,筛选出脾靶向脂质(Nature Biomedical Engineering, 2026.3)。此外,北大PILOT平台通过多肽-可电离脂质实现了五器官可调控靶向(Nature Materials, 2025.9)。

相关文献

本文引用的核心研究

[1] Padilla MS, Hamilton AG, Yamagata HM, Mitchell MJ, et al. Liver-Detargeted Aromatic Bioreducible mRNA Lipid Nanoparticles Confer Lymph Node Tropism and Robust Antigen-Specific Immunity. J Am Chem Soc. 2026;148(13):14137-14150. DOI: 10.1021/jacs.6c00080

[2] Albumin-recruiting lipid nanoparticle potentiates the safety and efficacy of mRNA vaccines by avoiding liver accumulation. Nature Materials. 2025. DOI: 10.1038/s41563-025-02284-w

[3] Tissue-specific mRNA delivery and prime editing with peptide–ionizable lipid nanoparticles. Nature Materials. 2025;25(1):133-145. DOI: 10.1038/s41563-025-02320-9

[4] Artificial intelligence-guided design of LNPs for in vivo targeted mRNA delivery via analysis of the spatial conformation of ionizable lipids. Nature Biomedical Engineering. 2026. (DOI待确认)

[5] Zhao S, Gao K, Han H, Barron AE, Murthy N, et al. Acid-degradable lipid nanoparticles enhance the delivery of mRNA. Nature Nanotechnology. 2024;19(11):1702-1711. DOI: 10.1038/s41565-024-01765-4

冰合试剂提供LNP配方核心原料,包括可电离脂质/阳离子脂质DSPE-PEG及PEG化磷脂系列)、功能化磷脂DSPE-PEG修饰系列,含NHS、MAL、NH₂、Biotin多种端基)、双功能PEG交联剂异官能团PEG系列)及点击化学试剂Tetrazine / TCO / DBCO系列),支持多规格定制,可配合新型可电离脂质的配方优化研究。如需技术咨询或定制服务,请联系:023-68279488 | 19923948071 | 19112026971

学术版权声明:本文基于 J Am Chem Soc (2026, 148(13), DOI: 10.1021/jacs.6c00080)、Nature Materials (DOI: 10.1038/s41563-025-02284-w, 10.1038/s41563-025-02320-9)、Nature Biomedical Engineering (2026) 及 Nature Nanotechnology (2024, 19(11), DOI: 10.1038/s41565-024-01765-4) 发表的论文进行客观学术解读。所有原创图文的版权归属原始论文作者团队及出版机构。

⚠️ 产品合规声明:本文章所涉及的功能化磷脂、可电离脂质及PEG化衍生物产品为科研用化学试剂,仅限实验室研究使用,不用于人体临床、诊断或治疗用途。

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