
期刊:Science Advances
发表时间:2025年
研究机构:Icahn School of Medicine at Mount Sinai
通讯作者:Yizhou Dong, Ph.D.
这个范式的关键洞察是:LNP穿越BBB不需要"外挂"一个靶向配体(如抗体偶联),而是让脂质本身自带靶向能力。传统做法是在已形成的LNP表面接枝靶向分子,工艺复杂且配体密度难控;Dong团队的方案是让可电离脂质的头部"就是"配体,组装时自动定位到LNP表面,一步到位。
这个范式可以迁移到其他靶器官:如果你想让LNP靶向肺,找一个肺内皮特异性受体的配体,同样的"配体→脂质头部"转化逻辑就能用。这也是为什么理解这个设计思路比记住OS4T的具体配方更重要。
SR-57227是一个5-HT受体激动剂,已知能通过5-HT受体介导的胞吞作用跨越BBB。Dong团队将其分为三个结构模块设计SLs(SR-57227-derived Lipids):
共合成了10种SLs(S0-S9),与DOPE(膜扰动辅脂质)、胆固醇(膜稳定)、DMG-PEG2k(隐身保护层)和FLuc mRNA组装成SLNP库,通量筛选后发现OS4 LNP(含S4脂质)在脑部mRNA递送效率更突出。
为进一步提升细胞穿膜能力,团队在OS4 LNP配方基础上引入Tat穿膜肽(YGRKKRRQRRR)共孵育,形成OS4T LNP。Tat肽来源于HIV-1转录激活蛋白,已知能促进脂质体与细胞膜的融合和内吞后内涵体逃逸。
经冷冻电镜和动态光散射表征,OS4T LNP粒径约120-160 nm,PDI < 0.25,表面电荷约+15 mV,稳定性与经典MC3 LNP相当。
在C57BL/6小鼠中经尾静脉给药FLuc mRNA-LNP(0.6 mg/kg),6小时后活体成像显示:
OS4→OS4T这12.7倍的跳跃不是简单"加了个肽"——Tat肽的引入重构了LNP穿越BBB的路径权重:巨胞饮的贡献从>70%跳到约95%,原本不参与的clathrin途径也被激活(约25%抑制),而caveolae的权重反而从>90%降到约75%。换句话说,Tat肽让OS4T从"以caveolae为主"的单路径模式切换为"巨胞饮主导+caveolae+clathrin协同"的多路径模式,穿越效率因此大幅提升。这个发现也提示:优化脑靶向LNP不只是选对配体,还要关注内吞途径的权重分配。
免疫荧光切片验证确认,mRNA翻译产物分布在皮层、海马、纹状体等多个脑区,细胞类型涵盖神经元(NeuN+)、星形胶质细胞(GFAP+)和小胶质细胞(Iba1+)。
团队通过药理学抑制实验系统验证了OS4T LNP穿越BBB的分子路径:
作为对照,OS4 LNP(不含Tat肽)的机制略有不同:caveolae抑制>90%,巨胞饮抑制>70%,clathrin无显著影响。提示Tat肽的引入不仅增强了穿膜能力,还改变了内吞途径的权重分配——OS4T LNP主要通过5-HT受体识别 → 巨胞饮 + caveolae + 部分clathrin多途径协同 → 转胞吞作用(transcytosis)穿越脑毛细血管内皮细胞。记住这个排序:巨胞饮是OS4T穿越BBB的第一大途径,caveolae是第二大,clathrin是辅助——正是Tat肽的加入把巨胞饮权重从>70%拉到约95%,才让OS4T比OS4再提升12.7倍。
在原位GBM小鼠模型中,OS4T LNP递送编码改构白细胞介素-12(eIL-12)mRNA(1.0 mg/kg,每5天一次,共3次),相比MC3T LNP和OS4 LNP对照组:
同样是Dong团队、同样做脑靶向LNP,2025年2月发表在 Nature Materials 的MK16 BLNP走了完全不同的技术路线[8]。两篇论文的对比,恰好展示了脑靶向LNP的两条主流思路:
本文引用的核心研究
[1] Guo K, Wang C, Zhong Y, et al. Lipid nanoparticles for mRNA delivery in brain via systemic administration. Science Advances, 2025. 10.1126/sciadv.adw0730
[2] Mitchell MJ, Billingsley MM, Haley RM, et al. Engineering precision nanoparticles for safe and effective mRNA delivery. Nature Reviews Drug Discovery, 2021, 20(2): 101-124. 10.1038/s41573-020-0090-1
[3] Hou X, Zaks T, Langer R, et al. Lipid nanoparticles for mRNA delivery. Nature Reviews Materials, 2021, 6(12): 1078-1094. 10.1038/s41578-021-00358-0
[4] Cheng Q, Wei T, Farbiak L, et al. Selective organ targeting (SORT) nanoparticles for tissue-specific mRNA delivery and CRISPR-Cas gene editing. Nature Nanotechnology, 2020, 15(4): 313-320. 10.1038/s41565-020-0669-6
[5] Kim J, Eygeris Y, Ryals RC, et al. Strategies for non-viral vectors targeting organs beyond the liver. Nature Nanotechnology, 2024, 19(4): 428-447. 10.1038/s41565-023-01563-4
[6] Dilliard SA, Siegwart DJ. Passive, active and endogenous organ-targeted lipid and polymer nanoparticles for delivery of genetic drugs. Nature Reviews Materials, 2023, 8: 282-300. 10.1038/s41578-022-00503-7
[7] Cullis PR, Hope MJ. Lipid nanoparticle systems for enabling gene therapies. Molecular Therapy, 2017, 25(7): 1467-1475. 10.1016/j.ymthe.2017.03.013
[8] Liu Z, Tian M, Guo K, et al. Blood-brain-barrier-crossing lipid nanoparticles for mRNA delivery to the central nervous system. Nature Materials, 2025. 10.1038/s41563-024-02114-5
实现脑靶向LNP的配方优化和功能验证,DOPE、mPEG-DMG、DLin-MC3-DMA、DSPE-PEG-NHS等脂质冰合试剂(单体(重庆)生物科技有限公司,bhshiji.com)均有现货供应,更多递送系统耗材见冰合官网产品资讯聚合页。
本文为学术论文解读,所述机制与数据均来自公开学术文献,仅供科研学习参考,不构成商业应用承诺。
文中试剂仅限实验室研究使用,不用于人体临床、诊断或治疗。「冰合试剂」为单体(重庆)生物科技有限公司注册商标,本文由单体(重庆)生物科技有限公司发布。